乳酸脱氢酶（LactateDehydrogenase，LDH）试剂盒说明书
分光光度法50管/24样
注意：正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
LDH（EC1.1.1.27）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，是糖酵解途径的末端酶，催化丙酮酸与乳酸之间的可逆反应，伴随着NAD+/NADH之间互变。
测定原理：
LDH催化NAD+氧化乳酸生成丙酮酸，丙酮酸进一步与2,4-二硝基苯肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙，在碱性溶液中显棕红色，颜色深浅与丙酮酸浓度成正比。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：30mL×1瓶，4℃保存；
试剂一：液体15mL×1瓶，4℃保存；
试剂二：粉剂×1支，-20℃保存，用时加入10μL试剂五和1.3mL蒸馏水充分溶解备用，用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融；
试剂三：液体15mL×1瓶，4℃保存；
试剂四：液体50mL×1瓶，4℃保存；
试剂五：液体μL×1支，4℃保存；
样品测定的准备：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（个）：提取液体积（mL）为0~：1的比例（建议万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或W，超声3s，间隔10s，重复30次）；g4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。g4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
测定步骤：
分光光度计预热30min以上，调节波长至nm，蒸馏水调零。
2、样本测定（在EP管中加入下列试剂）
充分混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴15min
充分混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴15min
充分混匀，室温静置15分钟，nm下测定吸光度，计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需要设一个对照管。
LDH活力单位的计算：
1、标准条件下测定的回归曲线，y=0.x+0.(x为标准品浓度，umol/mL；y为ΔA)。
2、血清（浆）LDH活力的计算
单位的定义：每mL血清（浆）每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH（nmol/min/mL）=（ΔA-0.）÷0.÷T×=73.2×ΔA
3、细胞、细菌和组织中LDH活力的计算
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH（nmol/min/mgprot）=[（ΔA-0.）÷0.×V1]÷(V1×Cpr)÷T×=73.2×ΔA÷Cpr
需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒。
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH（nmol/min/g鲜重）=[（ΔA-0.）÷0.×V1]÷(W×V1÷V2)÷T×=73.2×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
LDH（nmol/min/cell）=[（ΔA-0.）÷0.×V1]÷(×V1÷V2)÷T×=0.×ΔA
V1：加入反应体系中样本体积，0.05mL；V2：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，15min；Cpr：蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；：细胞或细菌总数，万。
标准曲线线性范围为：0.1umol/mL-2umol/mL。
ΔA线性范围为：0.01-2。
lmbio.